Chemical control of whitefly (Bemisia tabaci) biotype B (Hemiptera: Aleyrodidae) in cotton crop

Authors

  • Bruna Guimarães da Silva University Center of Southwest Goiano, UniBRAS, Rio Verde, Goias, Brazil
  • Fernando Rezende Côrrea DeLollo Research Station, Rio Verde, Goias, Brazil https://orcid.org/0000-0001-7110-3611
  • Nelmício Furtado da Silva University of Rio Verde, UniRV, Rio Verde, Goias, Brazil https://orcid.org/0000-0001-7055-8075
  • Wendson Soares da Silva Cavalcante University of Rio Verde, UniRV, Rio Verde, Goias, Brazil
  • Daniele Ferreira Ribeiro GPAC – Cerrado Agriculture Research Group, Rio Verde, Goias, Brazil
  • Estevão Rodrigues MRE Agropesquisa, Rio Verde, Goias, Brasil

DOI:

https://doi.org/10.14295/bjs.v2i2.273

Keywords:

insecticide, efficiency, Gossypium hirsutum, pest management

Abstract

Cotton crop (Gossypium hirsutum) is an oilseed with herbaceous-shrubby habit. Whitefly (Bemisia tabaci), which is a polyphagous insect, presents direct and indirect damage to this crop through ingestion. The main method of controlling this pest is the use of insecticides, with different mechanisms of action. The objective was to verify the efficiency after application of different insecticide options for the control of whitefly nymphs in the cotton crop. The treatments were different: 1-Witness; 2-Ciantraniliprole (35 g a.i.ha-1); 3-Ciantraniliprole (40 g a.i.ha-1); 4-Ciantraniliprole (45 g a.i.ha-1); 5-Ciantraniliprole (50 g a.i. ha-1); 6-Ciantraniliprole + mineral oil (35 g a.i.ha-1 + 756 g a.i.ha-1); 7-Acetameprid + Pyriproxifen (60 g a.i.ha-1 + 30 g a.i.ha-1); 8-Abamectin + Ciantraniliprole (20 g ai ha-1 + 5 g a.i ha-1) and 9-Sulfoxaflor + adhesive spreader (96 g a.i.a ha-1 + 4.5 g a.i.a ha-1). Two foliar applications were carried out, with an interval of 10 days (23/02/21 and 05/03/21), using the costal equipment with CO2 pressurization, equipped with a spray bar, with a spray volume of 150 L ha-1. At the time of applications, the culture was between stages (V7 and B4), respectively. An evaluation was carried out before the infestation and after application 3, 7 and 10 after the first one (DA1A); 3,7 and 10 after the second application (DA2A). The evaluations were made by counting the number of whitefly nymphs in 10 leaves of each plot with the aid of a binocular stereoscopic magnifying glass (20X). Data were transformed (√x+K) by the statistical software SASM®. Being interpreted by the Scott-Knott 5% mean test. It is concluded that the application Acetamiprid + Piriproxifem (60 g ai ha-1 + 30 g ai ha-1) and Ciantraniliprole at doses (40 and 50 g ai ha-1) stood out in relation to the other treatments.

References

Abd-Rabou, S., & Simmons, A. M. (2010). Survey of reproductive host plants of Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae) in Egypt, including new host records. Entomological News, 121(5), 456-465. https://doi.org/10.3157/021.121.0507 DOI: https://doi.org/10.3157/021.121.0507

Abbott, W. S. (1925). A method of computing the effectiveness of an insecticide. J. econ. Entomol, 18(2), 265-267. DOI: https://doi.org/10.1093/jee/18.2.265a

Agrofit (2021). Sistema de agrotóxicos fitossanitários. Disponível em: <http://agrofit.agricultura.gov.br/agrofit_cons/principal_agrofit_cons>. Acessado em: 17 out. 2021.

Alencar. J. A. (2010). Dinâmica populcional da mosca-banca em meloeiro em condições semi-áridas do Nordeste brasileiro. Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento, 62. Empraba Semi-Árido. Petrolina. Disponível em: http://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/CPATSA/29972/1/BPD62.pdf.

Araújo, E. L., Juliatti, F. C., Ferreira, A. D. C. L., Fernanndes, E. C., & Sousa, M. M. (2013). Eficiência de acetamiprido e etofenproxi no controle de Ceratitis capitata (Diptera: Tephritidae), na cultura da mangueira. ACSA - Agropecuária Científica no Semiárido, 9(3), 99-103. http://revistas.ufcg.edu.br/acsa/index.php/ACSA/article/view/415/pdf#

Arnemann, J. A., Bevilaqua, J. G., Bernardi, L., da Rosa, D. O., da Encarnação, F. A., Pozebon, H., ... & Rohrig, A. (2019). Integrated management of tomato whitefly under greenhouse conditions. Journal of Agricultural Science, 11(5), 443-453. https://doi.org/10.5539/jas.v11n5p443 DOI: https://doi.org/10.5539/jas.v11n5p443

Asiimwe, P., Ecaat, J. S., Otim, M., Gerling, D., Kyamanywa, S., & Legg, J. P. (2007). Life‐table analysis of mortality factors affecting populations of Bemisia tabaci on cassava in Uganda. Entomologia Experimentalis et Applicata, 122(1), 37-44. https://doi.org/10.1111/j.1570-7458.2006.00487.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1570-7458.2006.00487.x

Azevedo, P. V. D., & Silva, F. D. D. S. (2007). Risco climático para o cultivo do algodoeiro na região Nordeste do Brasil. Revista Brasileira de Meteorologia, 22(3), 408-416. DOI: https://doi.org/10.1590/S0102-77862007000300012

Banzatto, D. A., Kronka, S. N. (2006). Experimentação Agrícola. 4. Ed. – Jaboticabal: Funep.

Barry, J. D., Portillo, H. E., Annan, I. B., Cameron, R. A., Clagg, D. G., Dietrich, R. F., ... & Kaczmarczyk, R. A. (2015). Movement of cyantraniliprole in plants after foliar applications and its impact on the control of sucking and chewing insects. Pest Management Science, 71(3), 395-403. https://doi.org/10.1002/ps.3816 DOI: https://doi.org/10.1002/ps.3816

Blonski, M. s., Appoloni, C. R., Parreira, P. S., Aragão, P. H. A., & Filho, V. F. N. (2007). Elementary chemical analysis in leaves infected by fumagina by X-ray fluorescence technique. Brazilian Archives of Biology and Technology, 50(5), 851-860. https://doi.org/10.1590/S1516-89132007000500013 DOI: https://doi.org/10.1590/S1516-89132007000500013

Canteri, M. G., Althaus, R. A., das Virgens Filho, J. S., Giglioti, E. A., & Godoy, C. V. (2001). SASM-AGRI-Sistema para análise e separação de médias em experimentos agrícolas pelos métodos Scott-Knott, Tukey e Duncan. Revista Brasileira de Agrocomputação, 1(2), 18-24.

Conab (2021). Companhia Nacional de Abastecimento. Séries históricas. Brasília. Disponível em: www.conab.gov.br. Acesso em: 02 nov. 2021.

EPPO (2012). Insecticide co-formulated mixture. Efficacy evaluation of plant protection products EPPO Bulletin, 42, 353-357. DOI: https://doi.org/10.1111/epp.2608

Filho, P. A. B., Silva, R. C., & Quintela, E. D. (2014). In: XXV Congresso Brasileiro de Entomologia, 14 a 18 de setembro de 2014, Centro de Convenções Goiânia, Estado de Goiás, Brasil, 1 p.

Gallo, D., Nakano, O., SILVEIRA NETO, S., Carvalho, R. P. L., BAPTISTA, G. D., Berti Filho, E., ... & Lopes, J. (2002). Manual de entomologia agrícola. Piracicaba: FEALQ.

ImaMT (2016). Instituto Mato Grossense do Algodão. Pressão de mosca-branca no início da safra preocupa pesquisadores, produtores e técnicos. Cuiabá, 2016. Disponível em: Acessado em: 11 ago. 2016.

Machado, T. M., Barbosa, M. F., Rezende, A. V. S., & Bueno, R. S. (2019). Pontas tipo cone com variação da taxa de aplicação e velocidade na cultura do algodoeiro. Nativa, 7(3), 301-305. https://doi.org/10.31413/nativa.v7i3.7528 DOI: https://doi.org/10.31413/nativa.v7i3.7528

Meier, U. (2001). BBCH-Monograph: growth stages of mono-and dicotyledonous plants (p. 158). Technical Report, 2 Edn. Federal Biological Research Centre for Agriculture and Forestry.

Moura, A. P. D., Filho, M. M., Guimarães, J. A. (2013). Manejo da resistência da mosca-branca Bemisia tabaci biótipo B (Hemiptera: Aleyrodidae) a agrotóxicos utilizados em hortaliças, Brasília, DF.

Morelli, R., Paranhos, B. J., & Costa, M. L. Z. (2012). Eficiência de Etofenproxi e Acetamiprido no controle de mosca-do-mediterrâneo Ceratitis capitata (Diptera: Tephritidae) em pomar de manga. BioAssay, 7(10), 1-6. https://doi.org/10.14295/BA.v7.0.83 DOI: https://doi.org/10.14295/BA.v7.0.83

Moscardi, F., Bueno, A. F., Sosa-Gómez, D. R., Roggia, S., Hoffmanncampo, C. B., Pomari, A. F., Corso, I. C., Yano, S. A. C. (2012). Artrópodes que atacam as folhas da soja. In: Hoffmann-Campo, C. B., Corrêa-Ferreira, B. S., Moscardi, F. (Eds). Soja: manejo integrado de insetos e outros artrópodespraga. Brasília - DF: Embrapa, 213-334.

Oliveira, C. E. S., Carneiro, D. E. F., Toscano, L. C., & Santos, R. M. F. (2018). Dinâmica populacional de Bemisia tabaci B (Gennadius, 1889) em cultivares de soja transgênica. Revista de Agricultura Neotropical, 5(2), 1-5. https://doi.org/10.32404/rean.v5i2.1425 DOI: https://doi.org/10.32404/rean.v5i2.1425

Prabhaker, N. I. L. I. M. A., Castle, S., Henneberry, T. J., & Toscano, N. C. (2005). Assessment of cross-resistance potential to neonicotinoid insecticides in Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae). Bulletin of Entomological Research, 95(6), 535-543. https://doi.org/10.1079/BER2005385 DOI: https://doi.org/10.1079/BER2005385

Puia, J. D., Martins B. R., Borsato, L. C., & Vigo, S. C. (2021). Comportamento diferencial de genótipos de algodoeiro à Cercospora grossypina. Nativa, 9(2), 163-166. https://doi.org/10.31413/nativa.v9i2.10834 DOI: https://doi.org/10.31413/nativa.v9i2.10834

Rodrigues, S. M. M., Pitta, R. M., & Santos, N. C. (2019). Effect of the larval density of Chrysodeixis includens (Lepidoptera, Noctuidae) on cotton yield. Nativa, 7(5), 490-493. http://dx.doi.org/10.31413/nativa.v7i5.6940 DOI: https://doi.org/10.31413/nativa.v7i5.6940

Sani, I., Ismail, S. I., Abdullah, S., Jalinas, J., Jamian, S., & Saad, N. (2020). A review of the biology and control of whitefly, Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae), with special reference to biological control using entomopathogenic fungi. Insects, 11(9). https://doi.org/10.3390/insects11090619 DOI: https://doi.org/10.3390/insects11090619

Santana, G. G., Boaventura, H. A., Arruda e Silva, J. F., & Quintela, E. D. (2020). In: 14ª Jovens Talentos, 8 a 10 de Junho de 2020, p. 29. https://www.alice.cnptia.embrapa.br/bitstream/doc/1132586/1/jt-p29.pdf

Santos, R. O., Degrande, P. E., Azambuja, R., Souza, E. P., Leal, M. F. (2015). Biologia de fases imaturas de Helicoverpa armigera (Hubner) (Lepidoptera: Noctuidae) em algodoeiro bt e não-bt. In: Congresso Brasileiro do Algodão, 10., 2015, Foz do Iguaçu. Anais... Foz do Iguaçu.

Silva, J. V. B., Gomes, R. S. S., Carvalho, T. K. N., Lacerda, A. V., Rodrigues, R. M., Medeiros, J. G. F. (2022). Controle de patógenos em sementes de algodão com o uso de Trichoderma harzianum. Nativa, 10(2), 204-210. https://doi.org/10.31413/nativa.v10i2.13563 DOI: https://doi.org/10.31413/nativa.v10i2.13563

Silva, L. D., Omoto, C., Bleicher, E., & Dourado, P. M. (2009). Monitoramento da suscetibilidade a inseticidas em populações de Bemisia tabaci (Gennadius)(Hemiptera: Aleyrodidae) no Brasil. Neotropical Entomology, 38(1), 116-125. https://doi.org/10.1590/S1519-566X2009000100013 DOI: https://doi.org/10.1590/S1519-566X2009000100013

Sosa-Gómez, D. R., Omoto, C. (2012). Resistência a inseticidas e outros agentes de controle em artrópodes associados à cultura da soja. In: Hoffmann-Campo, C. B., Corrêa-Ferreira, B. S., Moscardi, F. (Ed.). Soja: manejo integrado de insetos e outros artrópodes-praga. 1 ed. Brasília, DF: Embrapa, 673-723.

Tomaz, H. V. Q., Santos, L. V., Duvaresch, D. L., Carvalho, D. R., Macedo, M. G. (2016). Eficácia de Minecto Pro (cyantraniliprole + abamectina) no controle de mosca-branca (Bemisia tabaci) em meloeiro sob condições de campo na região de Aracati/CE In: Congresso Brasileiro de Olericultura, 54. Anais... Recife, 2016. p. 233.

Toscano, L. C., Junior, A. L. B., Martins, G. L. M., & Maruyama, W. I. (2016). Biologia de Bemisia tabaci (Genn.) biótipo B (Hemiptera: Aleyrodidae) em genótipos de tomateiro em duas épocas. Revista de Agricultura Neotropical, 3(4), 1-6. https://doi.org/10.32404/rean.v3i4.1124 DOI: https://doi.org/10.32404/rean.v3i4.1124

Wang, R., Zhang, W., Che, W., Qu, C., Li, F., Desneux, N., & Luo, C. (2017). Lethal and sublethal effects of cyantraniprole, a new anthranilic diamide insecticide, on Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae) MED. Crop Protection, 91, 108-113. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2016.10.001 DOI: https://doi.org/10.1016/j.cropro.2016.10.001

Published

2023-02-01

How to Cite

Silva, B. G. da, Côrrea, F. R., Silva, N. F. da, Cavalcante, W. S. da S., Ribeiro, D. F., & Rodrigues, E. (2023). Chemical control of whitefly (Bemisia tabaci) biotype B (Hemiptera: Aleyrodidae) in cotton crop. Brazilian Journal of Science, 2(2), 86–97. https://doi.org/10.14295/bjs.v2i2.273

Issue

Section

Agrarian and Biological Sciences